Odwiedź GUYA – Pierwsza europejska marka Guayusa
GuayusaWiki

Metody analityczne

Kompleksowe szczegóły metodologiczne dotyczące analizy fitochemicznej Ilex guayusa

Ilex guayusa

Nazwa naukowa rośliny Guayusa. Pierwszy opis w 1901 roku przez Theodora Loesenera. Synonimy: Ilex guayusa var. macrophylla.

Verwandte Themen:

BotanikTaxonomie
Mehr Infos
dla profesjonalistów

W skrócie
Najważniejsze punkty w pigułce:
  • Przegląd
  • Przygotowanie próbek
  • Metody HPLC

    HPLC

    Wysokosprawna chromatografia cieczowa – standardowa metoda ilościowej analizy polifenoli i alkaloidów w guayusie. Typowa metoda: kolumna C18, gradient acetonitrylu, detekcja UV przy 280 nm.

    Mehr Infos
  • Metody LC-MS/MS

    LC-MS/MS

    Chromatografia cieczowa sprzężona z tandemową spektrometrią mas - wysoce czuła metoda identyfikacji i ilościowego oznaczania metabolitów wtórnych. Stosowana do analizy saponin i polifenoli w Guayusa.

    Mehr Infos
  • GC-MS

    GC-MS

    Chromatografia gazowa sprzężona ze spektrometrią mas – metoda analityczna do identyfikacji lotnych związków. Stosowana do analizy aromatów w guayusie.

    Mehr Infos
    dla związków lotnych

Ta strona jest przeznaczona dla naukowców, analityków i profesjonalistów. Zawiera szczegółowe informacje metodologiczne dotyczące analizy składników guayusa.

Przegląd metod analitycznych

Fitochemiczna charakterystyka Ilex guayusa wymaga połączenia różnych technik analitycznych. Wybór metody zależy od docelowego związku, matrycy i wymaganej czułości.

MetodaZwiązki doceloweLODCzas analizyKoszty
HPLC-DADPolifenole, Kofeina0,1-1 μg/mL30-60 min€€
HPLC-DAD-ESI/MSnPolifenole (wyjaśnienie struktury)0,01-0,1 μg/mL45-90 min€€€
LC-MS/MS (QqQ)Alkaloidy, Saponiny0,001-0,01 μg/mL15-30 min€€€€
GC-MSLotne związki0,01-0,1 ng/mL30-45 min€€€
Spektroskopia UV-VisCałkowite Polifenole (TPC)1-10 μg/mL5-10 min€
NMRWyjaśnienie struktury1-10 mg1-4 h€€€€€

Przygotowanie próbek

Przygotowanie próbek jest kluczowe dla reprodukowalnych i dokładnych wyników. Liście guayusy zawierają wysokie stężenia polifenoli, które są wrażliwe na utlenianie.

Standardowy protokół analizy polifenoli (García-Ruiz et al. 2017)

Materiały

  • Liofilizowane liście Guayusa (mielone, <0,5 mm)
  • Roztwór ekstrakcyjny: metanol/woda (70:30, v/v) + 1% kwasu mrówkowego
  • Filtr PVDF 0,45 μm (Millex HV13, Millipore)
  • Kąpiel ultradźwiękowa (40 kHz)
  • Wirówka (9.500 × g)

Protokół

  1. Ważenie: 100 mg liofilizowanego proszku w 15 mL probówce Falcona
  2. Ekstrakcja 1: dodać 1 mL roztworu ekstrakcyjnego, vortexować (30 s)
  3. Ultradźwięki 1: 60 min w temperaturze pokojowej w kąpieli ultradźwiękowej
  4. Inkubacja: przez noc w 4°C
  5. Ultradźwięki 2: ponownie 60 min w kąpieli ultradźwiękowej
  6. Wirowanie: 9.500 × g, 5 min, temperatura pokojowa
  7. Filtracja: Przez filtr PVDF 0,45 μm
  8. Przechowywanie: W 4°C w ciemności, max. 48 h przed analizą

Współczynniki odzysku

Klasa związkuOdzysk (%)RSD (%)
Kwas chlorogenowy94,2 ± 3,13,3
Flawonoidy91,8 ± 4,24,6
Katechiny88,5 ± 5,15,8
Kofeina98,7 ± 1,21,2

Ekstrakcja karotenoidów (Stinco et al. 2016)

Protokół

  1. Ważenie: 10 mg liofilizowanego proszku
  2. Usunięcie wody: 1 mL wody MilliQ, vortexować, wirować (18.000 × g, 3 min), wyrzucić
  3. Ekstrakcja 1: 1 mL heksanu/acetonu (1:1, v/v), vortexować, wirować (18.000 × g, 3 min)
  4. Ekstrakcja 2: 500 μL heksanu/acetonu, vortexować, wirować
  5. Łączenie: Łączenie faz organicznych
  6. Zmydlanie: KOH w metanolu (30 g/100 mL), 1 h w RT w ciemności
  7. Płukanie: Wodą do pH neutralnego
  8. Odparowanie: Koncentrator próżniowy, <30°C
  9. Rozpuszczanie: W 100 μL octanu etylu
  10. Przechowywanie: Pod N₂ w -20°C

Czynniki krytyczne

  • Utlenianie: Polifenole szybko utleniają się → Kwas mrówkowy jako przeciwutleniacz, przechowywanie w 4°C w ciemności
  • Światło: Karotenoidy są fotolabilne → Praca w półmroku, szkło bursztynowe
  • Temperatura: Enzymy mogą rozkładać Polifenole → Liofilizacja lub natychmiastowa ekstrakcja
  • Wartość pH: Wpływa na stabilność i ekstrakcję → pH 2-3 optymalne dla polifenoli

Metody HPLC

HPLC-DAD für Quantifizierung

Wysokosprawna chromatografia cieczowa z detektorem diodowym text_563 jest standardową metodą do ilościowego oznaczania polifenoli i kofeiny.

Układ urządzenia (García-Ruiz et al. 2017)

  • System: Agilent 1220 Infinity LC
  • Pompa: Pompa gradientowa binarna
  • Autosampler: Objętość wstrzyknięcia 20 μL
  • Piecyk kolumnowy: 30°C
  • Detektor: DAD, 200-600 nm

Warunki chromatograficzne

ParametrWartość
KolumnaLuna C18 (25 cm × 4,6 mm, 5 μm, Phenomenex)
Wstępna kolumnaC18, 4 × 3 mm
Faza mobilna AWoda + 0,1% kwasu mrówkowego
Faza mobilna BMetanol + 0,1% kwasu mrówkowego
Przepływ1,0 mL/min
Objętość wstrzyknięcia20 μL
Temperatura kolumny30°C
Czas trwania60 min

Program gradientowy

Czas (min)%A (woda)%B (metanol)
0955
59010
158020
257030
356040
454060
502080
55595
60955

Długości fal detekcji

Klasa związkuλmax (nm)Kwantyfikacja przy
Kwas hydroksyzimtsowy (kwasy chlorogenowe)325330 nm
Flawonole (Kwercetyna, Kaempferol)365360 nm
Katechiny280280 nm
Kofeina272272 nm
Antocyjany (jeśli występują)520520 nm

Kalibracja

Zewnętrzna kalibracja z substancjami standardowymi:

StandardZakres stężenia (μg/mL)R²Liniowość
Kwas chlorogenowy (5-CQA)1-1000,9998Doskonały
Rutyna (Kwercetyna-3-O-rutynozyd)0,5-500,9996Doskonały
Epikatechina0,5-500,9992Doskonały
Kofeina5-5000,9999Doskonały

HPLC-DAD-ESI/MSn für Strukturaufklärung

Sprzężenie HPLC z spektrometrią masową umożliwia identyfikację nieznanych związków poprzez wzorce fragmentacji.

Parametry MS (García-Ruiz et al. 2017)

ParametrWartość
Spektrometr masowyAgilent Ion Trap (G2445A)
JonizacjaElektrospray (ESI)
TrybNegatywna jonizacja
Temperatura kapilary350°C
Napięcie kapilarne4 kV
Ciśnienie nebulizera65 psi
Przepływ N₂11 L/min
Zakres skanowaniam/z 100-1200
Gaz kolizyjnyHel
Energia kolizyjna0,3-2,0 V (ramping)

Przykład: Identyfikacja kwercetyny-3-O-heksozydu

  • Czas retencji: 32,4 min
  • Spektrum UV: λmax 256, 355 nm (typowe dla Flawonolu)
  • [M-H]⁻: m/z 463
  • MS² (463): m/z 301 [M-H-162]⁻ (utrata heksozy)
  • MS³ (301): m/z 179, 151 (typowy wzór fragmentacji kwercetyny)
  • Identyfikacja: Kwercetyna-3-O-glukozyd lub -galakozyd

Charakterystyczne fragmentacje

Klasa związkuCharakterystyczne straty neutralneTypowe fragmenty
Kwas chlorogenowy-162 (kwas chinowy), -176 (kwas kawowy)m/z 191 (kwas chinowy), 179 (kwas kawowy)
Glikozydy kwercetyny-162 (heksoza), -146 (ramnoza), -308 (rutynozyd)m/z 301 (aglikon kwercetyny)
Glikozydy kemferolu-162 (heksoza), -146 (ramnoza)m/z 285 (aglikon kemferolu)
Katechiny-152 (galusan)m/z 289 (epikatechina), 139 (kwas galusowy)

Metody LC-MS/MS (Triple Quadrupole)

Do wysoko czułej ilościowej analizy alkaloidów i saponin stosuje się LC-MS/MS z trójkwadrupolowymi spektrometrami masowymi w trybie Multiple Reaction Monitoring (MRM).

Kwantyfikacja kofeiny (Krieger et al. 2016)

Parametry LC

ParametrWartość
KolumnaAcquity UPLC BEH C18 (50 mm × 2,1 mm, 1,7 μm)
Faza mobilna A0,1% kwasu mrówkowego w wodzie
Faza mobilna B0,1% kwasu mrówkowego w acetonitrylu
Przepływ0,4 mL/min
Objętość wstrzyknięcia5 μL
Czas trwania5 min

Parametry MS/MS (tryb MRM)

AnalitJon prekursorowy (m/z)Jon produktu (m/z)Energia zderzenia (eV)LOQ (ng/mL)
Kofeina195,1 [M+H]⁺138,1 (kwantyfikator)205
Kofeina195,1 [M+H]⁺110,1 (kwalifikator)25-
Teobromina181,1 [M+H]⁺138,11810
Paraksantyna (IS)181,1 [M+H]⁺124,122-

Walidacja metody

ParametrKofeinaTeobromina
Liniowość (R²)0,99980,9995
LOD (ng/mL)1,53,0
LOQ (ng/mL)5,010,0
Precyzja wewnątrz dnia (RSD%)2,84,1
Precyzja między dniami (RSD%)4,25,9
Odzysk (%)97,3 ± 3,194,8 ± 4,5
Efekt matrycy (%)-8,2-12,5

Analiza saponin (Chianese et al. 2019)

Saponiny triterpenowe wymagają specjalnych warunków jonizacji i strategii fragmentacji.

Przejścia MRM dla Ilexsaponin

Saponina[M-H]⁻ (m/z)Główne fragmenty (m/z)CE (eV)
Ilexsaponina A927,5455,3 (Aglykon)35
Ilexsaponina B911,5455,3 (Aglykon)35
Kwas ursolowy455,3407,3 [M-H-CO₂]⁻25
Kwas oleanolowy455,3407,3 [M-H-CO₂]⁻25

GC-MS dla związków lotnych

Chromatografia gazowa-spektrometria masowa jest stosowana do analizy lotnych składników aromatycznych w guayusie.

Headspace-SPME-GC-MS

Warunki SPME

  • Włókno: DVB/CAR/PDMS (50/30 μm, Supelco)
  • Temperatura próbki: 60°C
  • Czas ekstrakcji: 30 min
  • Desorpcja: 250°C, 3 min w iniekcji GC

Parametry GC-MS

ParametrWartość
KolumnaDB-5MS (30 m × 0,25 mm, 0,25 μm)
Gaz nośnyHel, 1,0 mL/min (stały)
Temperatura iniekcji250°C
Tryb iniekcjiBez podziału
Program pieczenia40°C (3 min) → 5°C/min → 250°C (5 min)
Linia transferowa280°C
Źródło jonówEI, 70 eV, 230°C
Zakres skanowaniam/z 35-350

Zidentyfikowane związki lotne

ZwiązekRT (min)Częstość względna (%)Nota zapachowa
Linalol18,312,4Kwiatowy, cytrusowy
α-Terpineol19,78,2Bez, drewniany
Geraniol21,26,5Różany
β-Ionon28,45,1Fiołkowy, drewniany
Heksanal8,94,8Trawiasty, zielony
(E)-2-Heksenal10,23,9Zielony, liściasty

Metody spektroskopowe

Spektrometria UV-Vis

Metoda Folin-Ciocalteu (Całkowita zawartość fenoli)

Kolorimetrische Bestimmung des Gesamtpolyphenolgehalts.

Protokół
  1. 0,5 mL ekstraktu (lub standardu) w 15 mL probówce
  2. Dodać 2,5 mL odczynnika Folin-Ciocalteu (rozcieńczone 1:10)
  3. Inkubować przez 2 min w RT
  4. Dodać 2 mL roztworu Na₂CO₃ (75 g/L), wymieszać
  5. Inkubować przez 15 min w 50°C
  6. Schłodzić do RT
  7. Mierzyć absorbancję przy 750 nm
Kalibracja
  • Standard: Kwas galusowy
  • Zakres stężenia: 10-90 mg/L
  • Liniowość (R²): 0,9997
  • Wynik: mg równoważników kwasu galusowego (GAE) / g masy suchej

Spektroskopia NMR

Spektroskopia rezonansu jądrowego do ustalania struktury izolowanych związków.

Warunki standardowe

Parametr¹H-NMR¹³C-NMR
Częstotliwość600 MHz150 MHz
rozpuszczalnikCD₃OD, DMSO-d₆CD₃OD, DMSO-d₆
temperatura25°C25°C
ilość próbki1-5 mg5-20 mg
czas pomiaru10-30 min2-8 h

Techniki 2D-NMR

  • COSY: ¹H-¹H-korelacje
  • HSQC: ¹H-¹³C-korelacje (1 wiązanie)
  • HMBC: ¹H-¹³C-korelacje (2-3 wiązania)
  • NOESY: Bliskość przestrzenna protonów

Kapacitet antyoksydacyjny

ORAC (Zdolność absorpcyjna rodników tlenowych)

Metoda oparta na fluorescencji do pomiaru zdolności antyoksydacyjnej.

Protokół (mikropłytka 96-dołkowa)

  1. Przygotowanie odczynników:
    • Fluorescein: 1 μM in Phosphatpuffer (pH 7,4)
    • AAPH: 250 mM w buforze fosforanowym
    • Standardy Trolox: 10-200 μM
  2. Schemat pipetowania:
    • 150 μL Fluorescein in jedes Well
    • 25 μL próbka/standard/blankiet
    • Inkubacja 15 min w 37°C
    • Dodać 25 μL AAPH (początek reakcji)
  3. Pomiar:
    • Fluoreszenz alle 2 min für 120 min
    • Ekscytacja: 485 nm, emisja: 520 nm
    • Temperatura: 37°C
  4. Obliczenia:
    • AUC (Area Under Curve) für jede Probe
    • Netto AUC = AUC_Próbka - AUC_Blank
    • Wynik: μmol ekwiwalentów Troloxu / g

Typowe wartości ORAC

PróbkaORAC (μmol TE/g DW)
Guayusa (świeża)127,8 ± 8,3
Guayusa (fermentowana)101,2 ± 7,1
zielona herbata80-100
Yerba Mate90-120

Test DPPH

Schnelle spektrophotometrische Methode.

Protokół mikrotablic

  1. 250 μL roztworu DPPH (w metanolu) do każdego dołka
  2. Dodać 2 μL próbki/standardu
  3. Inkubować 50 min w RT w ciemności
  4. Mierzyć absorbancję przy 515 nm
  5. Obliczenia: % inhibicji = [(A_Blank - A_Probe) / A_Blank] × 100

FRAP (Moc przeciwutleniająca redukująca żelazo)

Misst die Reduktionskraft von Antioxidantien.

Reagenz FRAP

  • Bufor octanowy (300 mM, pH 3,6): 25 mL
  • TPTZ (10 mM w 40 mM HCl): 2,5 mL
  • FeCl₃·6H₂O (20 mM): 2,5 mL
  • Mieszać świeżo przed użyciem, podgrzać do 37°C

Wykonanie

  1. 10 μL próbki + 300 μL odczynnika FRAP
  2. Inkubować 4 min w 37°C
  3. Mierzenie absorbancji przy 593 nm
  4. Kalibracja z FeSO₄ (100-1000 μM)
  5. Wynik: μmol Fe²⁺-ekwiwalentów / g

Walidacja metody

Validierung analytischer Methoden nach ICH Q2(R1) Richtlinien.

Parametry walidacji

1. Specyficzność/Selektywność

  • Dowód, że metoda mierzy tylko docelowy analit
  • Brak interferencji ze strony matrycy lub innych związków
  • Test: Analiza próbki kontrolnej, standardu, próbki; sprawdzenie czystości szczytu

2. Liniowość

KryteriumWymaganieMetody Guayusa
współczynnik korelacji (R²)≥ 0,9950,9992-0,9999
Liczba punktów kalibracyjnych≥ 56-8
Zakres stężenia80-120% docelowego stężenia50-150%
ResztyLosowo rozłożone✓

3. Precyzja

TypWarunkiWymagania RSDDane Guayusa
Precyzja powtarzalnościTen sam dzień, ten sam analityk< 5%1,2-4,6%
Precyzja pośredniaRóżne dni< 10%3,3-5,9%
ReprodukowalnośćRóżne laboratoria< 15%Nie testowane

4. Dokładność (Accuracy)

  • Odzysk: 90-110% (dla głównych składników)
  • Metoda: Eksperymenty odzysku z dodatkiem
  • Dane Guayusa: 88,5-98,7%

5. Granica wykrywalności i oznaczania

ParametrDefinicjaObliczenia
LOD (Limit wykrywalności)Najmniejsza wykrywalna ilość3,3 × σ / S
LOQ (Limit ilościowy)Najmniejsza ilość możliwa do ilościowego oznaczenia10 × σ / S

σ = odchylenie standardowe odpowiedzi, S = nachylenie krzywej kalibracyjnej

6. Odporność

Niewrażliwość metody na małe zmiany:

  • Wartość pH fazy mobilnej (±0,2)
  • Przepływ (±10%)
  • Temperatura kolumny (±5°C)
  • Długość fali (±2 nm)
  • Różne kolumny (ten sam typ, różne partie)

7. Stabilność

Typ stabilnościWarunkiWyniki Guayusa
Stabilność autosamplera4°C, 48 hStabilna (<5% degradacji)
Stabilność na blacieRT, 6 hPolifenole: -8%, Kofeina: stabilna
Stabilność zamrażania i rozmrażania3 cykleStabilna (<10% degradacji)
Stabilność długoterminowa-20°C, 6 miesięcyStabilna (<10% degradacji)

Kontrola jakości

Zapewnienie jakości danych poprzez systematyczne działania QC.

Próbki QC

Typ QCStężenieCzęstotliwośćKryterium akceptacji
Pusty0Każda sekwencja (początek)Brak pików przy Analyt-RT
LLOQ (Dolna granica LOQ)LOQKażda sekwencja80-120% nominalnego stężenia
QC Niskie3 × LOQWszystkie 10 próbek85-115%
QC ŚrednieŚrodek zakresuWszystkie 10 próbek85-115%
QC Wysokie80% górnej granicyWszystkie 10 próbek85-115%

Test odpowiedniości systemu (SST)

Należy wykonać przed każdą sekwencją:

ParametrWymaganieObliczenia
Powtarzalność czasu retencjiRSD < 1%6 iniekcji standardu
Powtarzalność powierzchni pikówRSD < 2%6 iniekcji standardu
Rozdzielczość (Rs)> 1,5Rs = 2(tR2 - tR1) / (w1 + w2)
Współczynnik tailingu (Tf)< 2,0Tf = (a + b) / 2a
Teoretyczna liczba Boden (N)> 2000N = 16 (tR / w)²

Dokumentacja

  • Przygotowanie próbek: Protokół z datą, analitykiem, numerami partii
  • Dziennik urządzenia: Konserwacja, wymiana kolumn, problemy
  • Krzywe kalibracyjne: Równanie, R², wykres reszt
  • Wykresy QC: Wykresy Levey-Jennings do monitorowania trendów
  • Out-of-Specification (OOS): Dokumentacja i badanie odchyleń

Materiały referencyjne

StandardCzystośćŹródłoPrzechowywanie
Kofeina≥ 99%Sigma-AldrichRT, suche
Kwas chlorogenowy (5-CQA)≥ 95%Sigma-Aldrich-20°C, suche
Rutyna≥ 94%Sigma-Aldrich-20°C, suche
Epikatechina≥ 98%Sigma-Aldrich-20°C, suche
Trolox≥ 97%FlukaRT, suche

Najnowsza metodyka i badania (2024–2026)

Nowsze prace (2024–2026) usprawniły głównie workflowy i "zielone" przetwarzanie: profilowanie kwasów chlorogenowych, metabolomikę nieukierunkowaną oraz techniki ekstrakcji/oczyszczania.

  • Metodyka: Workflow dla kwasów chlorogenowych (J Chromatogr A 2026, PMID: 41604851): HPLC‑UV (5‑CQA) + LC‑MS/MS, feature-based molecular networking i Chemometria.
  • Metodyka: Metabolomika nieukierunkowana (Food Chemistry 2026, PMID: 41643380): GC‑EI‑MS, 205 metabolitów; wiek liści i światło jako kluczowe czynniki.
  • Przetwarzanie/metodyka: Supercritical antisolvent (Molecules 2024, PMID: 39598698): kwasy chlorogenowe skoncentrowane, Kofeina selektywnie <1% m/m; enkapsulacja z PVP.
  • W druku: Zrównoważona ekstrakcja z użyciem sprężonych płynów (DOI: 10.1016/j.supflu.2025.106801).
  • W druku: Ekstrakcja wodą podkrytyczną dla składników funkcjonalnych (DOI: 10.1016/j.scp.2026.102338).
Metodyka

Garzón, T., et al. (2026)

Integrated HPLC-UV validation and LC-MS/MS optimization with molecular networking

molecular networking

Podejście obliczeniowe (np. GNPS), które łączy widma MS/MS według podobieństwa. Ułatwia wykrywanie rodzin powiązanych związków i wspiera anotację.

Mehr Infos
and chemometrics for advanced characterization of chlorogenic acids in Ilex

Ilex

Botaniczny rodzaj ostrokrzewów obejmujący około 400-600 gatunków na całym świecie. Do tego rodzaju należą Ilex guayusa, Ilex paraguariensis (Mate) oraz Ilex vomitoria (Yaupon).

Verwandte Themen:

BotanikTaxonomie
Mehr Infos
guayusa

PMID: 41604851. DOI: 10.1016/j.chroma.2026.466732

  • Projekt: Workflow: walidacja HPLC‑UV dla 5‑CQA + zoptymalizowane UPLC‑MS/MS (FastDDA) z łączeniem surowych danych; feature-based molecular networking i Chemometria (PCA/volcano/HCA).
  • Najważniejsze wyniki: LOQ 0,25 mg/L i r²≈0,998 dla 5‑CQA. Łączenie danych zwiększyło liczbę cech o 43%. Najsilniejszy wpływ na różnice składu: lokalizacja geograficzna, następnie światło i wiek rośliny.
  • Interpretacja: Konsekwencja dla QC: łączyć markery ukierunkowane (np. 5‑CQA) z profilowaniem nieukierunkowanym/Networking; dokumentować pochodzenie, światło/cień i wiek dla porównywalności partii.
Metodyka

Pastuña-Fasso, J.V., et al. (2026)

Influence of plant age and sunlight exposure on the volatile profile and metabolomic pathways of Ilex guayusa leaves used in the traditional Amazonian beverage

PMID: 41643380. DOI: 10.1016/j.foodchem.2026.148238

  • Projekt: Metabolomika nieukierunkowana ekstraktów wodnych (GC‑EI‑MS); adnotacja metabolitów z użyciem MZmine, MS‑DIAL, eRah i MSHub/GNPS; porównanie wieku rośliny oraz światło vs cień.
  • Najważniejsze wyniki: 205 metabolitów; fenole były wyższe przy świetle, a lipidy dominowały w cieniu; mapowanie szlaków wskazało m.in. fenylopropanoidy, metabolizm tyrozyny i degradację kwasów tłuszczowych.
  • Interpretacja: Wspiera tezę, że parametry uprawy (wiek, zacienienie) są widoczne analitycznie. Dla standaryzacji: kontrolować lub co najmniej dokumentować te czynniki.
Metodyka

Meneses, M.Á., et al. (2024)

Green Processing of Ilex guayusa: Antioxidant Concentration and Caffeine Reduction Using Encapsulation by Supercritical Antisolvent Process

PMID: 39598698. DOI: 10.3390/molecules29225309

  • Projekt: Supercritical antisolvent (SAE) do frakcjonowania: ekstrakt etanolowy, 80–150 bar przy 35–45°C; koprecypitacja/enkapsulacja z PVP (1:1 do 1:2 m/m).
  • Najważniejsze wyniki: Optimum (120 bar/45°C): kwasy chlorogenowe 43,02 → 237 mg/g; Kofeina selektywnie <1% m/m; PVP zwiększało uzysk (>2×) i sprzyjało tworzeniu mikropartykuł.
  • Interpretacja: Relewantne dla „zielonego” przetwarzania i wytwarzania składników ubogich w kofeinę, bogatych w Polifenole. Dla analityki ważne, bo takie produkty nie są porównywalne z klasycznym naparem liści.
W druku

In press (2026)

Towards sustainable extraction of bioactive compounds from guayusa (Ilex guayusa): A comparative study on compressed fluids’ performance

DOI: 10.1016/j.supflu.2025.106801

  • Projekt: W druku: porównanie wydajności sprężonych płynów (compressed fluids) w zrównoważonej ekstrakcji bioaktywnych związków guayusy.
  • Najważniejsze wyniki: Z tytułu: porównanie performance procesu. Szczegóły (np. uzysk/selektywność/metryki) są w artykule.
  • Interpretacja: Bez publicznie dostępnego abstraktu: tylko ostrożna klasyfikacja na podstawie tytułu i czasopisma. Dodać parametry i KPI po uzyskaniu dostępu.
W druku

In press (2026)

Subcritical water extraction of Ilex guayusa for regulatory-compliant neuro-metabolic functional ingredients

DOI: 10.1016/j.scp.2026.102338

  • Projekt: W druku: ekstrakcja wodą podkrytyczną guayusy w celu uzyskania zgodnych regulacyjnie składników funkcjonalnych.
  • Najważniejsze wyniki: Z tytułu: woda w warunkach podkrytycznych jako „zielony” rozpuszczalnik i nacisk na zgodność regulacyjną. Parametry/cele: patrz artykuł.
  • Interpretacja: Bez publicznego abstraktu: ostrożna, tytułowa klasyfikacja. Dodać szczegóły, gdy będą dostępne.

Wichtige Literatur für Analytiker

  • García-Ruiz, A., et al. (2017). Guayusa (Ilex guayusa L.) new tea: phenolic and carotenoid composition and antioxidant capacity. J Sci Food Agric, 97(12), 3929-3936. [Umfassende HPLC-DAD-ESI/MSn-Methode]
  • Krieger, D.R., et al. (2016). The safety, pharmacokinetics, and nervous system effects of two natural sources of caffeine. Clin Transl Sci, 9(5), 246-251. [LC-MS/MS für Koffein-Pharmakokinetik]
  • Stinco, C.M., et al. (2016). RRLC-DAD-APCI-MS analysis of carotenoids. Food Chem, 211, 876-883. [Carotinoid-Analytik]
  • Chianese, G., et al. (2019). Phytochemical analysis of Ilex guayusa. Il Farmaco, 74(1), 85-93. [Saponin-Charakterisierung mit NMR und MS]
  • ICH Q2(R1). (2005). Walidacja procedur analitycznych: tekst i metodologia. [Wytyczne walidacyjne]

Odkryj GUYA

Doświadcz autentycznej Guayusy z Ekwadoru z przejrzystym łańcuchem dostaw i bezpośrednim wsparciem społeczności Kichwa.

Do GUYA - drinkguya.com →

Zobacz także

Nauka

Skład chemiczny

Detaillierte Phytochemie der Inhaltsstoffe

Nauka

Badania naukowe

Forschungsmethoden und Ergebnisse

Rolnictwo

Uprawa i przetwarzanie

Einfluss von Anbau auf Inhaltsstoffgehalt